Macskák szájüregében jelentkező gyulladásos folyamatok fertőző eredetének oktani vizsgálata

Abstract

A macskák szájüregében jelentkező elváltozásokat gyakran hozzák összefüggésbe különböző fertőző ágensekkel, mint például vírusokkal és baktériumokkal. Korábbi felmérések keretén belül a stomatitises macskákban a macska leukémia vírusát (FeLV), a macska fertőző immunhiány vírusát (FIV), macska calicivírust (FCV), macska 1-es típusú herpesvírust (FHV1), panleukopeniát (FPV), a baktériumok közül pedig a Chlamydophila psittaci-t és a Bordetella bronchiseptica-t sikerült kimutatni. Munkánk keretében 22 stomatitises macska esetében vizsgáltuk a korábban említett kórokozók jelenlétét. Fizikális vizsgálattal a macskákat -a tünetek súlyossága alapján- 4 kategóriába soroltuk, majd vért vettünk haematológiai, biokémiai paraméterekre (alanin-aminotranszferáz, gamma-glutamiltranszferát, kreatinin, albumin, total protein) valamint virológiai vizsgálatokra. A FeLV és FIV meghatározást ELISA módszerrel is elvégeztük. A szájüregi elváltozásokból altatásban tampon és bioptátum mintát vettünk. A kórokozók kimutatását a klinikai mintákban (peripheriás vérből szeparált leukocyták, szájüreg-tamponok és biopsziák) polimeráz láncreakció (PCR) alapú eljárások segítségével kíséreltük meg. Mindegyik kórokozót külön reakcióban vizsgáltuk pozitív és negatív kontrollok felhasználása mellett. A reakciók során keletkezett amplikonok méretét standard 50 bp molekulatömeg marker segítségével határoztuk meg. A sebészeti beavatkozás során nyert biopsziákat pufferolt formaldehid oldatban fixáltuk 24 órán keresztül, majd a rutin kórszövettani technikák alkalmazásával a kapott szövetmetszeteket hematoxilinnal és eozinnal, illetve Giemsamódszerrel festettük és fénymikroszkóp segítségével vizsgáltuk. PCR-alapú vizsgálataink során a 22 állatból származó vérminták közül 2 macskánál sikerült a FeLV vírusát kimutatni A szájüregtampon minták közül egyben igazoltuk az FCV genom jelenlétét valamint a két FeLV pozitív vérminta közül egy esetben a hozzá tartozó szájüreg-tampon mintából is sikerült kimutatni a macska leukémia vírusát. Az ELISA módszerrel végzett FIV tesztek 3/22 esetben pozitív, a többi esetben negatívak voltak. 2 állatnál találkoztunk pozitív eredménnyel FeLV esetében valamint a Merial cég witness FeLV tesztjével egyszer kaptunk pozitív eredményt. A kórszövettani vizsgálat során főleg nem specifikus, idült, lymphoplasmasejtes stomatitist figyeltünk meg. A vizsgált kórszövettani minták közül csupán egyben állapítottunk meg eosinophilsejtes granuloma komplexre jellemző elváltozásokat. A kapott eredmények azt sugallják, hogy a magyarországi, stomatitis klinikai jeleit mutató macskapopulációban fertőző ágenseknek tulajdonított szerep sokkal kisebb, mint azt korábban gondoltuk. A néhány esetben kimutatott vírusos hátterű stomatitisek mellett sem az FPV, sem az FHV-1 vírus nem fordult elő, valamint nem tudtuk kimutatni a Chlamydophila psittaci és a 32 Bordatella bronchiseptica baktériumok jelenlétét sem. A betegség kóroktanának, esetleges megelőzésének vagy hatékony terápiás lehetőségeinek tisztázása további széleskörű kutatásokat és nagyszámú klinikai vizsgálatokat igényel.

Several infective agents are suspected in the background of the stomatitis in the cat, like viruses and bacterias. In the earlier made measurements showed that the most common diseases are the viruses like feline leukemia virus (FeLV), feline immunodeficiency virus (FIV), Feline calici virus (FCV), feline herpesvirus type-1 (FHV-1), panleukopenia (FPV), and the bacteriums like Chlamydophila psittaci and Bordetella bronchiseptica. The aim of our study was examine the causative agents of the stomatitis in the cat. 22 cats were categorised in 4 categories according to the symptoms of the oral cavity. Following the physical examinations, laboratory parameters were checked from the blood (CBC, alanine-aminotransferase, gamma-glutamiltransferase, kreatinin, albumin, total protein). Microbiological examinations for the above mentioned viruses and bacterials were also performed by ELISA and PCR test from the blood and the oral swab and biopsy sample. From the mouth cavity swabs the presence of the FCV genom was prooved by PCR method in one case. Also with PCR technology 1/22 FeLV virus was detected from blood samples additionally in one case FeLV was certified from blood sample and swab. Also in this case leukosis was detected by ELISA and wFeLV method. 3/22 Feline immunodeficiency virus was prooved by ELISA technology but these results were not confirmed by any other diagnostic method. Other cauative agent were not certified in our research. The biopsies from surgical interventions were fixed in buffered Formaldehyde solution for 24 hours, than routine staining technics were used like hematoxilin eosin and Giemsa method. Mostly non specific, chronic, lymphoplasmacell stomatitis were detected by hystopathologic examinations. Only in one sample eosinophil granuloma complex-like mutation was prooved from 22 cases. According to our results, in the background of the stomatitis in the cats, the causative agents play less role than it was suspected before. The future clarification of the etiology of stomatitis in the cat, its efficient therapic opportunities and its possible anticipation needs a lot more research and clinical examinations in the future.